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大花蕙兰组织培养的关键性技术研究

Form: 论文之家作者：叶梅 Publish: 2004-10-15 Hits:-

【中文题名】

大花蕙兰组织培养的关键性技术研究

【英文题名】

Study on the Crucial Techniques of Cymbidium Grandiflorium in Tissue Culture

【学科专业】

生物医学工程

【论文级别】

硕士论文

【投稿时间】

2004-10-15

【中关键词】

大花蕙兰,褐变,热激,原球茎,苯丙氨酸裂解酶,多酚氧化酶

【英关键词】

Cymbidium Grandiflorium, Browning, phenylalanine ammonia-lyase, Heat Shock, polyphenoloxidase, protocorm like-body,

【分类导航】

农业科学>园艺>观赏园艺（花卉和观赏树木）>多年生花卉类>其他花卉类>兰科植物

【论文摘要】

本文主要针对大花蕙兰组织培养中的几个关键性技术问题,分别以茎尖和假鳞茎为外植体,探讨了优化配方、原球茎增殖、褐变机理以及褐变防止等问题,重点研究了褐变的机理,为大花蕙兰的工业化育苗提供了技术参考依据,同时也为木本植物中常见的褐变问题的解决奠定了理论基础。主要的研究结果如下: 在对大花蕙兰最佳配方的培养基筛选过程中,得到如下结论: 原球茎诱导培养阶段:最适培养基为MS + BA1.5mg/l + NAA0.1 mg/l,2个月后启动率可达81.4%; 原球茎增殖培养阶段:最适培养基为MS+BA1.0mg/l+NAA0.03mg/l,原球茎增殖最快,一个月后增殖量可达5.8; 原球茎分化培养阶段:MS + BA0.5mg/l + NAA0.8mg/l最好,一个月分化率可达89.4%; 生根培养阶段:促进根生长的最适培养基是1/2MS + BA0.3mg/l + NAA0.5mg/l+香蕉泥150g/l,根系粗壮。各种因素对原球茎增殖的影响:液体振荡培养、薄层切割培养、5个大小的切块利于原球茎的增殖(见图3.1~图3.3)。结合分析对照组和热激组的总酚含量(TP)、褐变度(BD...

【论文题纲】

中文摘要	4-5
英文摘要	5-7
英文缩略词	7-11
1 绪论	11-23
1.1 植物组织培养	11-12
1.1.1 植物组织培养概念	11
1.1.2 植物组织培养的应用与意义	11-12
1.2 兰花组织培养的研究	12-20
1.2.1 国内外兰花组培研究概况	12-13
1.2.2 兰花组织培养的优点	13
1.2.3 兰花组织培养的关键问题	13-20
1.3 本文的主要研究工作	20-23
1.3.1 本文的研究意义	20
1.3.2 课题的研究思路与构想	20-21
1.3.3 本课题的创新之处	21
1.3.4 本课题的技术路线	21-23
2 大花蕙兰的快速繁殖技术研究	23-34
2.1 材料	23-25
2.1.1 实验材料	23
2.1.2 主要试剂	23
2.1.3 培养基的配制及接种	23-25
2.1.4 主要仪器	25
2.1.5 培养条件	25
2.2 实验方法	25-27
2.2.1 技术路线	25
2.2.2 茎尖的消毒	25
2.2.3 正交实验设计筛选原球茎的诱导培养基	25-26
2.2.4 正交实验设计筛选原球茎增殖培养基	26
2.2.5 原球茎分化培养基	26-27
2.2.6 诱导生根培养	27
2.3 实验结果与分析	27-32
2.3.1 原球茎诱导的最佳配方的数学运算	27-29
2.3.2 原球茎增殖的最佳配方的数据分析	29-31
2.3.3 原球茎分化的最佳配方	31-32
2.3.4 诱导生根的最佳配方	32
2.4 讨论	32-34
3 各种因素对大花蕙兰原球茎增殖的影响	34-39
3.1 实验材料	34-35
3.1.1 实验材料	34
3.1.2 主要试剂	34
3.1.3 培养基的配制及接种	34
3.1.4 主要仪器设备	34
3.1.5 培养条件	34-35
3.2 实验内容	35
3.2.1 培养方式大花蕙兰原球茎增殖的影响	35
3.2.2 切割方式对大花蕙兰原球茎增殖的影响	35
3.2.3 切块大小对大花蕙兰原球茎增殖的影响	35
3.3 结果与分析	35-37
3.3.1 原球茎增殖量的计算	35
3.3.2 培养方式大花蕙兰原球茎增殖的影响	35-36
3.3.3 切割方式对大花蕙兰原球茎增殖的影响	36-37
3.3.4 切块大小对大花蕙兰原球茎增殖的影响	37
3.4 讨论	37-39
4 褐变机理的初步探索	39-48
4.1 实验材料	40
4.1.1 实验材料	40
4.1.2 主要试剂	40
4.1.3 主要仪器设备	40
4.1.4 培养基的配制及接种	40
4.1.5 培养条件	40
4.2 实验内容	40-42
4.2.1 实验材料处理方法	41
4.2.2 假鳞茎的组织培养	41
4.2.3 总酚(TP)的测定	41
4.2.4 褐变度(BD)的测定	41
4.2.5 PAL活力测定	41-42
4.3 结果与分析	42-45
4.3.1 原球茎诱导培养期间酚类物质总量的分析	42-43
4.3.2 原球茎诱导培养期间BD变化分析	43
4.3.3 大花惠兰诱导培养期间PPO活性的变化	43-44
4.3.4 大花惠兰诱导培养期间PAL酶活性的变化	44-45
4.4 讨论	45-48
4.4.1 褐变机理的初步探讨	45-46
4.4.2 热激的褐变抑制机理探讨	46-48
5 褐变控制的研究	48-52
5.1 材料	48-49
5.1.1 实验材料	48
5.1.2 主要试剂	48
5.1.3 培养基的配制及接种	48
5.1.4 主要仪器设备	48
5.1.5 培养条件	48-49
5.2 实验内容	49
5.2.1 对培养材料进行预处理	49
5.2.2 在培养基中加入还原性物质或吸附剂	49
5.2.3 对外植体进行热激处理	49
5.3 结果与分析	49-50
5.4 讨论	50-52
6 结论及后续工作建议	52-55
6.1 本文的主要研究内容和结果	52
6.2 后续工作建议	52-55
致谢	55-56
参考文献	56-61
附录	61-63

【DOI】

LunWen.ID:2.2008.160002



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