| 【中文题名】 | 贵州春兰的离体培养及野生资源遗传多样性的分子评价 |
| 【英文题名】 | In Vitro Culture and Genetic Diversity Evaluation of Chunlan (Cymbidium Goeringii Rchb.f.) in GuiZhou |
| 【学科专业】 | 植物学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2007-8-29 |
| 【中关键词】 | 春兰,离体培养,遗传多样性,RAPD,分子标记, |
| 【英关键词】 | Cymbidium goeringii Rchb,In vitro culture,Genetic diversity,RAPD,Phylogeny, |
| 【分类导航】 | 生物科学>植物学>植物细胞遗传学>>> |
| 【论文摘要】 |
春兰(Cymbidium goeringii Rchb.f.)是一种具有很高观赏性价值的兰科兰属植物,传统上采用分株繁殖。随着现代生物技术的发展,以组织培养为主要手段的生物技术逐步应用到春兰的繁殖过程中,大幅度的提高了春兰的繁殖系数。而对春兰种质资源的遗传多样性研究,则有利于春兰种质资源的收集、保存、鉴定、创新和合理利用。本研究在春兰的离体培养和遗传多样性等领域开展了工作,以期为遗传改良和资源的开发利用提供理论指导和构筑技术平台。取得的结果如下:
1建立和优化了春兰种子培养技术体系
对春兰种子进行了非共生萌发研究,结果发现:果龄、灭菌方式、赤霉素预处理、基本培养基、碳源及添加植物生长调节剂等因子对种子的萌发率有很大的影响。适合春兰种子萌发的最佳培养基为:MS+NAA(1.0mg/L)+6-BA(1.0mg/L)+GA(1.5mg/L)+蔗糖(3.0%)+琼脂(0.7%)。首次较为全面对影响种子萌发的多个因素进行探讨,完善了春兰组织培养体系。
2建立和优化了兰属植物RAPD-PCR实验体系
对影响RAPD-PCR的Mg~(2+)、dNTPs、Taq酶及引物浓度等因子进行... |
| 【论文题纲】 |
|
摘要 |
6-7 |
|
Abstract |
7-9 |
|
缩略词表 |
9-10 |
|
前言 |
10-11 |
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第一章 研究综述 |
11-24 |
|
1 兰科植物离体培养及其应用的研究进展 |
11-18 |
|
1.1 兰科植物离体培养 |
11-16 |
|
1.1.1 外植体来源 |
11-14 |
|
1.1.1.1 胚培养 |
11-13 |
|
1.1.1.2 茎尖及侧芽培养 |
13 |
|
1.1.1.3 叶片培养 |
13 |
|
1.1.1.4 其他外植体培养 |
13-14 |
|
1.1.2 培养基及外界条件的研究 |
14-16 |
|
1.1.2.1 培养基 |
14-15 |
|
1.1.2.2 外界条件 |
15-16 |
|
1.2 离体培养在兰科植物遗传改良上的应用 |
16-18 |
|
1.2.1 杂交育种 |
16 |
|
1.2.2 离体诱变 |
16-17 |
|
1.2.3 遗传工程 |
17-18 |
|
1.2.3.1 转基因研究 |
17 |
|
1.2.3.2 原生质体的培养与融合 |
17-18 |
|
1.3 人工种子 |
18 |
|
1.4 种质资源的离体保存 |
18 |
|
2 遗传标记在遗传多样性研究中的应用 |
18-24 |
|
2.1 遗传多样性研究的意义 |
18-19 |
|
2.2 遗传多样性的研究方法 |
19-23 |
|
2.2.1 形态学方法 |
19-20 |
|
2.2.2 细胞学方法 |
20 |
|
2.2.3 生化标记方法 |
20-21 |
|
2.2.4 分子标记方法 |
21-23 |
|
2.2.4.1 多位点标记技术 |
21-22 |
|
2.2.4.2 单位点标记技术 |
22-23 |
|
2.3 RAPD标记在兰科植物遗传多样性研究中的应用 |
23-24 |
|
第二章 春兰的离体培养 |
24-37 |
|
1 引言 |
24 |
|
2 本研究的目的和内容 |
24-25 |
|
2.1 研究目的 |
24-25 |
|
2.2 研究主要内容 |
25 |
|
3 材料和方法 |
25-28 |
|
3.1 实验材料 |
25 |
|
3.2 实验方法 |
25-28 |
|
3.2.1 外植体的灭菌方式 |
25 |
|
3.2.2 赤霉素预处理对种子萌发的影响 |
25-26 |
|
3.2.3 基本培养基对种子萌发的影响 |
26 |
|
3.2.4 碳源对种子萌发的影响 |
26 |
|
3.2.5 激素对种子萌发的影响实验设计 |
26-27 |
|
3.2.6 原球茎的增殖培养 |
27-28 |
|
3.2.7 统计指标 |
28 |
|
4 结果与分析 |
28-33 |
|
4.1 果龄对种子萌发的影响 |
28-29 |
|
4.2 不同灭菌方式对种子萌发的影响 |
29-30 |
|
4.3 不同赤霉素浓度的预处理对种子萌发的影响 |
30 |
|
4.4 基本培养基对萌发率的影响 |
30-31 |
|
4.5 不同碳源对种子萌发的影响 |
31 |
|
4.6 激素对种子萌发的影响 |
31-33 |
|
4.6.1 生长素种类和浓度对萌发率的影响 |
31-32 |
|
4.6.2 细胞分裂素种类和浓度对萌发率的影响 |
32-33 |
|
4.6.3 赤霉素浓度对萌发率的影响 |
33 |
|
4.7 原球茎的产生与增殖 |
33 |
|
5 讨论 |
33-37 |
|
第三章 贵州春兰及其近缘种遗传多样性的评价 |
37-67 |
|
1 引言 |
37-38 |
|
2 研究的目的和内容 |
38 |
|
2.1 研究目的 |
38 |
|
2.2 研究内容 |
38 |
|
3 材料和方法 |
38-44 |
|
3.1 形态学评价 |
38 |
|
3.1.1 材料 |
38 |
|
3.1.2 形态学数据 |
38 |
|
3.2 遗传多样性的RAPD评价 |
38-44 |
|
3.2.1 材料 |
38-41 |
|
3.2.1.1 贵州春兰及其近缘种遗传多样性的RAPD评价 |
38-39 |
|
3.2.1.2 春兰不同自然分布区遗传多样性的RAPD评价 |
39-41 |
|
3.2.2 实验方法 |
41-44 |
|
3.2.2.1 DNA的分离与检测 |
41-43 |
|
3.2.2.2 RAPD-PCR实验体系的建立与优化 |
43 |
|
3.2.2.3 随机引物的筛选 |
43-44 |
|
3.2.2.4 RAPD标记数据 |
44 |
|
3.3 数据处理 |
44 |
|
3.3.1 形态学数据 |
44 |
|
3.3.2 分子标记数据 |
44 |
|
3.3.3 Mantel相关性检测 |
44 |
|
4 结果与分析 |
44-61 |
|
4.1 贵州春兰及其近缘种的形态学评价 |
44-46 |
|
4.2 贵州春兰及其近缘种的RAPD评价 |
46-61 |
|
4.2.1 基因组DNA的分离 |
46-47 |
|
4.2.2 春兰及其近缘种RAPD-PCR实验体系的建立与优化 |
47-49 |
|
4.2.3 引物筛选 |
49-50 |
|
4.2.4 12种兰属植物的RAPD鉴别 |
50-52 |
|
4.2.5 春兰及其近缘种亲缘关系的RAPD分析 |
52-54 |
|
4.2.6 贵州春兰不同自然分布区遗传多样性的RAPD评价 |
54-61 |
|
4.2.6.1 不同样品的RAPD标记的多态性 |
54-55 |
|
4.2.6.2 不同样品的多态性位点百分率 |
55-57 |
|
4.2.6.3 样品相似性的 RAPD分析 |
57-61 |
|
4.3 遗传距离的相关性检测 |
61 |
|
5 讨论 |
61-67 |
|
5.1 形态学标记与RAPD标记 |
61-63 |
|
5.2 春兰及其近缘种的RAPD鉴别 |
63 |
|
5.3 不同标记系统在供试兰属植物遗传多样性分析上的比较 |
63-64 |
|
5.4 关于莲瓣兰的归类问题 |
64-65 |
|
5.5 不同自然分布区春兰野生资源的遗传多样性 |
65-67 |
|
参考文献 |
67-77 |
|
图版与说明 |
77-79 |
|
致谢 |
79-80 |
|
| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.160558 |