| 【中文题名】 | 水痘—带状疱疹病毒疫苗株在Vero细胞中传代适应及ELISA检测血清IgG研究 |
| 【英文题名】 | Adaptation and Passages of Varicella-Zoster Virus Vaccine Strain in Vero Cell Cultures and Establishment of ELISA to Detect IgG in Serum |
| 【学科专业】 | 制药工程 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2007-5-29 |
| 【中关键词】 | 水痘-带状疱疹病毒疫苗株,Vero细胞,传代与适应,亲和层析,VZV糖蛋白ELISA,VZV全病毒ELISA |
| 【英关键词】 | Vaccine strain of Varicella-Zoster virus,Vero cell,Adaptation and passages,VZV gpELISA,VZV VAR ELISA, |
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| 【论文摘要】 |
水痘是由水痘-带状疱疹病毒(Varicella-Zoster virus ,VZV)引发的世界性传染疾病。为了研制疫苗和有效诊断水痘,本文研究了VZV疫苗株在Vero细胞中传代适应、制备VZV抗原工艺和ELISA方法。
将VZV疫苗株在Vero细胞中连续传代培养,传至第9代时,CPE明显增多,病毒滴度从2~3 log PFU/ml提高到≧4.2 log PFU/ml,能在超低温条件下稳定保存,表明毒株获得了适应性,可用于制备VZV抗原。培养条件试验表明,15L瓶旋转培养的适宜MOI(接种比例,logPFU/cell)为0.01,收获时间在60~96h。收获病变细胞,经超声破碎、离心,制备了VZV全病毒ELISA(VAR ELISA)抗原。用Triton X-100裂解,通过Lentil Lectin Sephrose 4B亲和层析纯化,制备了VZV糖蛋白ELISA( gpELISA)抗原,具有VZV特异性糖蛋白。两种抗原的稀释度达1:3000~1:4000。
研究了VZV VAR ELISA和gpELISA的反应条件,建立了相应的方法学。两种抗原最适使用稀释度为1:4000,pH7.... |
| 【论文题纲】 |
|
摘要 |
3-4 |
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ABSTRACT |
4-8 |
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前言 |
8-9 |
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第一章 文献综述 |
9-19 |
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1.1 水痘-带状疱疹病毒概况 |
9 |
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1.2 水痘流行病学 |
9-11 |
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1.2.1 临床表现与易感人群 |
9-10 |
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1.2.2 传播途径与流行特征 |
10-11 |
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1.3 水痘治疗与预防 |
11-12 |
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1.4 VZV 诊断方法 |
12-13 |
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1.4.1 临床诊断 |
12 |
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1.4.2 VZV 血清学诊断 |
12-13 |
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1.5 VZV 生物学特性 |
13-15 |
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1.5.1 形态特征 |
13 |
|
1.5.2 基因组 |
13 |
|
1.5.3 糖蛋白 |
13-14 |
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1.5.4 特性与培养 |
14-15 |
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1.6 VZV 毒种及培养细胞的选择 |
15-17 |
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1.6.1 人胚肺二倍体成纤维细胞 |
15 |
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1.6.2 VZV 减毒疫苗北京候选株 |
15-16 |
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1.6.3 Vero 细胞 |
16-17 |
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1.6.4 毒种适应的可行性与研究基础 |
17 |
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1.7 本文的研究内容与意义 |
17-19 |
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第二章 毒种适应及大规模培养 |
19-31 |
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2.1 实验材料 |
19-20 |
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2.1.1 病毒株、细胞系 |
19 |
|
2.1.2 试剂和培养基 |
19-20 |
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2.1.3 主要仪器 |
20 |
|
2.1.4 培养方法 |
20 |
|
2.2 实验方法 |
20-23 |
|
2.2.1 Vero 细胞的培养及传代 |
20-21 |
|
2.2.2 2BS 细胞的培养及传代 |
21 |
|
2.2.3 VZV 病毒在 Ver o 细胞中的传代适应 |
21 |
|
2.2.4 毒种制备及-70℃保存的稳定性 |
21 |
|
2.2.5 VZV 疫苗 Vero 细胞适应毒株最适培养条件的选择 |
21-22 |
|
2.2.6 VZV 疫苗 Vero 细胞适应毒株的蚀斑滴定方法 |
22 |
|
2.2.7 无菌试验 |
22 |
|
2.2.8 支原体检测 |
22 |
|
2.2.9 VZV 疫苗 Vero 细胞适应毒株的大规模培养 |
22-23 |
|
2.3 实验结果 |
23-30 |
|
2.3.1 VZV 疫苗株在 Vero 细胞中的传代适应 |
23-27 |
|
2.3.2 毒种在-70℃保存的稳定性 |
27 |
|
2.3.3 病毒最适培养条件的选择 |
27-28 |
|
2.3.4 VZV 疫苗 Vero 细胞适应毒株滴定的蚀斑 |
28-29 |
|
2.3.5 支原体检测 |
29 |
|
2.3.6 无菌试验 |
29 |
|
2.3.7 VZV 疫苗 Vero 细胞适应毒株的大规模培养 |
29-30 |
|
2.4 讨论 |
30 |
|
2.5 小结 |
30-31 |
|
第三章 VZV 全病毒和糖蛋白抗原的制备及纯化研究 |
31-44 |
|
3.1 实验材料 |
31-32 |
|
3.1.1 血清 |
31 |
|
3.1.2 主要试剂 |
31 |
|
3.1.3 主要仪器 |
31-32 |
|
3.2 实验方法 |
32-36 |
|
3.2.1 制备 VZV 全病毒抗原 |
32 |
|
3.2.2 制备 VZV 糖蛋白裂解物 |
32-33 |
|
3.2.3 VZV 糖蛋白裂解物的纯化 |
33-34 |
|
3.2.4 蛋白质含量测定 |
34 |
|
3.2.5 SDS-PAGE 电泳 |
34-35 |
|
3.2.6 ELISA 间接法测定抗原活性 |
35-36 |
|
3.3 实验结果 |
36-42 |
|
3.3.1 VZV 全病毒抗原和糖蛋白裂解物的制备 |
36-37 |
|
3.3.2 VZV 糖蛋白的纯化过程 |
37-39 |
|
3.3.3 VZV 糖蛋白纯化各组分的EILSA 抗原活性 |
39-41 |
|
3.3.4 洗脱峰蛋白质含量 |
41 |
|
3.3.5 VZV 糖蛋白的分子量 |
41-42 |
|
3.4 讨论 |
42-43 |
|
3.5 小结 |
43-44 |
|
第四章 VZV ELISA 检测血清 IgG 方法的建立和应用 |
44-60 |
|
4.1 实验材料 |
44-45 |
|
4.1.1 血清 |
44 |
|
4.1.2 主要试剂 |
44-45 |
|
4.1.3 主要仪器 |
45 |
|
4.2 实验方法 |
45-46 |
|
4.2.1 用ELISA 间接法检测IgG |
45-46 |
|
4.3 实验结果 |
46-58 |
|
4.3.1 VZV gpELISA 抗原最适使用浓度测定 |
46-47 |
|
4.3.2 VZV VAR ELISA 抗原最适使用浓度测定 |
47 |
|
4.3.3 包被缓冲液的选择 |
47-48 |
|
4.3.4 封闭条件的选择 |
48-49 |
|
4.3.5 VZV gpELISA 酶结合物工作浓度测定 |
49-50 |
|
4.3.6 HRP 作用底物的选择 |
50-51 |
|
4.3.7 抗体反应时间的选择 |
51-52 |
|
4.3.8 酶标抗体反应时间的选择 |
52-53 |
|
4.3.9 方法的特异性和敏感性 |
53-54 |
|
4.3.10 方法重现性 |
54-56 |
|
4.3.11 VZV ELISA 检测IgG 方法的应用 |
56-58 |
|
4.4 讨论 |
58-59 |
|
4.5 小结 |
59-60 |
|
第五章 结论与展望 |
60-62 |
|
5.1 结论 |
60 |
|
5.2 展望 |
60-62 |
|
参考文献 |
62-67 |
|
论文发表 |
67-68 |
|
致谢 |
68 |
|
| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.175933 |