| 【中文题名】 | 重组梅毒螺旋体抗原TpN17的纯化及基于金磁微粒梅毒螺旋体抗体的检测 |
| 【英文题名】 | Purification of Recombinant Treponema Pallidum Antigen TpN17 and Immunoassay for Treponema Pallidum Antibodies Using GoldMag Particles |
| 【学科专业】 | 细胞生物学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2007-8-29 |
| 【中关键词】 | 梅毒螺旋体,重组抗原TpN17,纯化,金磁微粒,梅毒螺旋体抗体,免疫学检测 |
| 【英关键词】 | Treponema pallidum,recombinant antigen TpN17,purification,GoldMag particles,Treponema pallidum antibody,immunoassay, |
| 【分类导航】 | 医药、卫生>基础医学>医学免疫学>>> |
| 【论文摘要】 |
梅毒是严重危害人类健康的传染病之一,其病原体为梅毒螺旋体(Treponema pallidum,Tp)。血清梅毒抗体水平是诊断梅毒螺旋体感染的主要指标,传统方法包括性病实验室研究试验、荧光螺旋体吸收试验和梅毒螺旋体血球凝集试验等。近年来,以酶标板为载体的梅毒螺旋体IgM和IgG抗体的检测已被用于临床检验和血站血液筛查。本研究工作包括两个部分:1.梅毒螺旋体抗原TpN17在毕赤酵母中的表达与纯化。2.以金磁微粒为载体,利用纯化得到的TpN17抗原和市售梅毒螺旋体混合抗原(TpN15,TpN17,TpN47)建立针对梅毒螺旋体抗体的双抗原夹心检测方法。
通过甲醇诱导,毕赤酵母表达系统中表达重组梅毒螺旋体抗原TpN17,样品经饱和硫酸铵沉淀粗提后,以阳离子层析交换柱对表达的TpN17进行进一步纯化。结果表明,样品经硫酸铵沉淀、PB复溶后以阳离子交换层析柱进行纯化,NaCl浓度梯度洗脱,可获得纯度大于90%的重组梅毒螺旋体抗原TpN17。Bradford法测定蛋白浓度为0.66 mg/mL。用过碘酸钠法将辣根过氧化物酶(HRP)标记到抗原TpN17上,双抗原夹心法测定HRP-TpN17滴度为1:3,... |
| 【论文题纲】 |
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中文摘要 |
4-6 |
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ABSTRACT |
6-11 |
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缩略词表 |
11-12 |
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引言 |
12-14 |
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第一章 文献综述 |
14-32 |
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1 梅毒的研究进展 |
14-18 |
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1.1 梅毒的流行病学 |
14-15 |
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1.2 梅毒螺旋体生物学特征和结构 |
15-17 |
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1.3 致病机理及临床表现 |
17-18 |
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2 梅毒螺旋体的检测 |
18-22 |
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2.1 梅毒螺旋体病原学检测 |
18-19 |
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2.1.1 暗视野显微镜法 |
18-19 |
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2.1.2 梅毒螺旋体镀银染色法 |
19 |
|
2.1.3 梅毒螺旋体免疫荧光染色法 |
19 |
|
2.2 梅毒螺旋体血清学检测 |
19-22 |
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2.2.1 非特异性梅毒螺旋体抗原血清学试验 |
20 |
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2.2.2 特异性梅毒螺旋体抗原血清学试验 |
20-22 |
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3 梅毒螺旋体抗原及其在梅毒螺旋体抗体检测中的应用 |
22-24 |
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4 免疫磁珠及其应用 |
24-32 |
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4.1 磁分离酶联免疫法原理 |
26-28 |
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4.2 磁分离酶联免疫法的应用 |
28-29 |
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4.3 金磁微粒及在免疫学检测中的应用 |
29-32 |
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第二章 重组梅毒螺旋体抗原TpN17的纯化 |
32-47 |
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1 材料与方法 |
32-38 |
|
1.1 材料 |
32-35 |
|
1.1.1 试剂与样品 |
32-34 |
|
1.1.2 仪器 |
34-35 |
|
1.2 方法 |
35-38 |
|
1.2.1 毕赤酵母菌株GS115对重组体pPIC9K-Tpp17的表达 |
35 |
|
1.2.2 确定TpN17抗原最佳(NH_4)_2SO_4沉淀饱和度 |
35 |
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1.2.3 离子交换层析条件的选择与样品的预处理 |
35-37 |
|
1.2.4 SDS-PAGE分析纯化结果 |
37-38 |
|
1.2.5 纯化抗原的浓度测定 |
38 |
|
1.2.6 纯化抗原的标记及其滴度测定 |
38 |
|
2 结果与讨论 |
38-45 |
|
2.1 TpN17抗原最佳(NH_4)_2SO_4沉淀饱和度 |
38-39 |
|
2.2 层析系统的选择 |
39-41 |
|
2.2.1 上样缓冲液pH值的选择 |
39-40 |
|
2.2.2 洗脱缓冲液离子强度的选择 |
40-41 |
|
2.3 纯化过程的放大 |
41-42 |
|
2.4 与商品化抗原的SDS-PAGE对比 |
42-43 |
|
2.5 纯化抗原的浓度测定 |
43-44 |
|
2.6 HRP标记TpN17抗原及其滴度测定 |
44-45 |
|
2.6.1 标记步骤 |
44 |
|
2.6.2 双抗原夹心法测定标记抗原滴度 |
44-45 |
|
3 结论 |
45-47 |
|
第三章 以金磁微粒为载体检测梅毒螺旋体抗体 |
47-64 |
|
1 材料与方法 |
47-51 |
|
1.1 材料 |
47-48 |
|
1.1.1 试剂与样品 |
47-48 |
|
1.1.2 仪器 |
48 |
|
1.2 方法 |
48-51 |
|
1.2.1 应用金磁微粒检测梅毒螺旋体抗体的原理 |
49 |
|
1.2.2 固定 |
49-50 |
|
1.2.3 封闭 |
50 |
|
1.2.4 双抗原夹心法检测梅毒螺旋体抗体基本步骤 |
50 |
|
1.2.5 双抗原夹心法检测梅毒螺旋体抗体条件的优选 |
50-51 |
|
1.2.6 献血者筛查中的初步应用 |
51 |
|
2 结果与讨论 |
51-62 |
|
2.1 金磁微粒的性质及抗原在其表面的固定化 |
51-52 |
|
2.2 TpN17抗原用于双抗原夹心法检测梅毒螺旋体抗体 |
52-55 |
|
2.2.1 检测梅毒螺旋体抗体条件的优选 |
52-53 |
|
2.2.2 与商品化TpN17抗原的比较 |
53 |
|
2.2.3 献血筛查中的初步应用 |
53-55 |
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2.3 商品化抗原TpN47、TpN17和TpN15用于双抗原夹心法检测梅毒螺旋体抗体 |
55-62 |
|
2.3.1 封闭缓冲液的选择 |
55-56 |
|
2.3.2 固定抗原量和HRP-标记抗原最佳工作浓度的选择 |
56-57 |
|
2.3.3 温育时间的选择 |
57-58 |
|
2.3.4 临界值的确定 |
58-59 |
|
2.3.5 检测系统的灵敏度分析 |
59-60 |
|
2.3.6 方法的精密度分析 |
60-61 |
|
2.3.7 系统的特异性分析 |
61-62 |
|
3 结论 |
62-64 |
|
全文小结 |
64-65 |
|
参考文献 |
65-75 |
|
致谢 |
75 |
|
| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.176297 |