| 【中文题名】 | 大菱鲆病原菌的鉴定及哈维氏弧菌溶血素的克隆 |
| 【英文题名】 | The Identification of Bacterial Pathogen from Turbot(Scophthalmus Maximus) and Clone of Hemolysin Gene from Vibrio Harveyi |
| 【学科专业】 | 海洋生物学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2004-11-2 |
| 【中关键词】 | 大菱鲆,病原菌,鉴定,16SrDNA,哈维氏弧菌,溶血素 |
| 【英关键词】 | Scophthalmus maximus,pathogen,identification,6SrDNA,Vibrio harveyi,hemolysin, |
| 【分类导航】 | 农业科学>水产、渔业>水产保护学>鱼病学>> |
| 【论文摘要】 | 从病大菱鲆中分离到九株菌VA-1、VA-2、VA-3、VH-1、VI-1、ET-1、EN-1、MA-1和PA-1。经形态及生理生化鉴定,VA-1、VA-2、VA-3为鳗弧菌,VH-1为哈维氏弧菌,VI-1为肠弧菌,ET-1为迟缓爱德华氏菌,EN-1属于肠球菌属,MA-1属于海单胞菌属,PA-1属于交替单胞菌属。
对九株菌的16SrDNA序列进行了扩增、克隆、测序和序列分析。序列分析结果显示,VA-1、VA-2、VA-3和鳗弧菌01和02a血清型亲缘关系最近;VH-1和哈维氏弧菌的亲缘关系最近;VI-1和肠弧菌的亲缘关系最近;ET-1和迟缓爱德华氏菌的亲缘关系最近;EN-1与肠球菌亲缘关系最近;PA-1与假交替单胞菌亲缘关系最近;而MA-1与海单胞菌亲缘关系较远。综合考虑形态及生理生化特征和16SrDNA序列分析结果,可以判定VA-1、VA-2、VA-3为鳗弧菌,VH-1为哈维氏弧菌,VI-1为肠弧菌,ET-1为迟缓爱德华氏菌,EN-1属于肠球菌属,PA-1属于假交替单胞菌属,而MA-1还需进一步鉴定。
腹腔注射感染实验表明,VA-1、VA-2、VA-3和ET-1对大菱鲆都有很强的致病性... |
| 【论文题纲】 |
|
中文摘要 |
7-9 |
|
英文摘要 |
9-11 |
|
第一章 文献综述 |
11-33 |
|
1 前言 |
11-12 |
|
2 鱼类细菌病原种类 |
12-15 |
|
3 细菌致病因子 |
15-22 |
|
3.1 粘附相关因子 |
15-17 |
|
3.2 毒力质粒及铁吸收系统 |
17-18 |
|
3.3 溶血素 |
18-20 |
|
3.4 次晶体表面蛋白层 |
20 |
|
3.5 脂多糖 |
20-21 |
|
3.6 外膜蛋白 |
21-22 |
|
4 病原菌的检测 |
22-24 |
|
4.1 特定基因片段的PCR检测技术 |
22 |
|
4.2 DNA指纹技术 |
22-23 |
|
4.3 16SrRNA检测技术 |
23-24 |
|
4.4 其它的检测技术 |
24 |
|
5 细菌性疾病的控制 |
24-27 |
|
5.1 选用遗传上抗病力较强的品种 |
24-25 |
|
5.2 合理的养殖管理方式 |
25 |
|
5.3 选用中草药 |
25 |
|
5.4 选用抗菌药物 |
25-26 |
|
5.5 疫苗的使用 |
26 |
|
5.6 免疫增强剂的使用 |
26 |
|
5.7 微生物管理及有益菌的利用 |
26-27 |
|
参考文献 |
27-33 |
|
第二章 大菱鲆疑似病原菌的形态及生理生化鉴定 |
33-50 |
|
1 弧菌的鉴定 |
33-41 |
|
1.1 材料与方法 |
33-34 |
|
1.1.1 菌株的来源 |
33 |
|
1.1.2 培养基 |
33 |
|
1.1.3 实验方法 |
33-34 |
|
1.2 结果 |
34-41 |
|
2 爱德华氏菌的鉴定 |
41-43 |
|
2.1 材料与方法 |
41 |
|
2.1.1 菌株的来源 |
41 |
|
2.1.2 培养基 |
41 |
|
2.1.3 实验方法 |
41 |
|
2.2 结果 |
41-43 |
|
3 肠球菌的鉴定 |
43-46 |
|
3.1 材料与方法 |
43-44 |
|
3.1.1 菌株的来源 |
43 |
|
3.1.2 培养基 |
43 |
|
3.1.3 实验方法 |
43-44 |
|
3.2 结果 |
44-46 |
|
4 海单胞菌和交替单胞菌的鉴定 |
46-48 |
|
4.1 材料与方法 |
46 |
|
4.1.1 菌株的来源 |
46 |
|
4.1.2 培养基 |
46 |
|
4.1.3 实验方法 |
46 |
|
4.2 结果 |
46-48 |
|
5 讨论 |
48-49 |
|
5.1 弧菌的鉴定 |
48 |
|
5.2 其它菌的鉴定 |
48-49 |
|
参考文献 |
49-50 |
|
第三章 疑似病原菌16SrDNA的克隆及序列分析 |
50-63 |
|
1 16SrDNA基因的扩增 |
50-53 |
|
1.1 材料与方法 |
50-53 |
|
1.1.1 菌株 |
50-51 |
|
1.1.2 培养基 |
51 |
|
1.1.3 试剂及仪器 |
51 |
|
1.1.4 引物设计及合成 |
51 |
|
1.1.5 细菌染色体DNA的提取 |
51-52 |
|
1.1.6 16SrDNA的扩增 |
52 |
|
1.1.6.1 PCR反应体系 |
52 |
|
1.1.6.2 PCR反应条件 |
52 |
|
1.1.7 扩增产物的检测 |
52-53 |
|
1.2 结果 |
53 |
|
2 16SrDNA的克隆 |
53-61 |
|
2.1 材料与方法 |
53-57 |
|
2.1.1 实验菌株 |
53 |
|
2.1.2 培养基 |
53 |
|
2.1.3 试剂及仪器 |
53-54 |
|
2.1.4 目的基因的纯化 |
54 |
|
2.1.5 目的基因与载体的连接 |
54 |
|
2.1.6 感受态细胞的制备 |
54-55 |
|
2.1.7 质粒的转化 |
55 |
|
2.1.8 质粒的提取 |
55-56 |
|
2.1.9 阳性克隆的鉴定 |
56-57 |
|
2.1.9.1 内切酶的选择 |
56 |
|
2.1.9.2 双酶切反应 |
56-57 |
|
2.2 16SrDNA序列的测定 |
57 |
|
2.3 16SrDNA序列分析与比较 |
57 |
|
2.4 结果 |
57-61 |
|
2.4.1 16SrDNA的克隆及阳性克隆的鉴定 |
57-58 |
|
2.4.2 九株菌的16S-rDNA序列分析 |
58-61 |
|
3 讨论 |
61-62 |
|
参考文献 |
62-63 |
|
第四章 疑似病原菌的致病性研究和药敏实验 |
63-74 |
|
1 材料和方法 |
63-64 |
|
1.1 菌株 |
63 |
|
1.2 实验动物 |
63 |
|
1.3 培养基 |
63 |
|
1.4 药敏纸片 |
63 |
|
1.5 人工感染实验 |
63-64 |
|
1.6 药物敏感实验 |
64 |
|
2 结果 |
64-70 |
|
2.1 疑似病原菌的致病性 |
64-66 |
|
2.2 疑似病原菌的药物敏感性 |
66-70 |
|
3 讨论 |
70-72 |
|
3.1 菌株对大菱鲆的致病性 |
70-71 |
|
3.2 菌株的药物敏感性 |
71-72 |
|
参考文献 |
72-74 |
|
第五章 哈维氏弧菌溶血素的克隆及测序 |
74-79 |
|
1 材料与方法 |
74-75 |
|
1.1 菌株 |
74 |
|
1.2 培养基 |
74 |
|
1.3 试剂及仪器 |
74 |
|
1.4 引物设计及合成 |
74 |
|
1.5 溶血素基因的PCR扩增、克隆 |
74-75 |
|
1.6 克隆片断的DNA序列测定及分析 |
75 |
|
2 结果 |
75-77 |
|
2.1 溶血素基因PCR扩增及克隆 |
75-76 |
|
2.2 溶血素基因的序列分析 |
76-77 |
|
3 讨论 |
77-78 |
|
参考文献 |
78-79 |
|
结论 |
79-80 |
|
致谢 |
80 |
|
| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.165380 |