| 【中文题名】 | 菜籽多糖RSPS1-3的分离纯化及一级结构研究 |
| 【英文题名】 | Studies on Extraction, Purification and Primary Structure of Polysaccharides RSPS1-3 from Rapeseeds Meal and Cake |
| 【学科专业】 | 农产品加工及贮藏工程 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2005-12-5 |
| 【中关键词】 | 菜籽多糖,分离纯化,一级结构,,, |
| 【英关键词】 | Rapeseeds polysaccharides（RSPS）,Isolation and purification,Primary structure, |
| 【分类导航】 | 工业技术>轻工业、手工业>食品工业>一般性问题>基础科学>食品化学 |
| 【论文摘要】 | 近年来,由于对膜的化学功能、免疫物质及新药物资源等研究的深入,人们发现多糖在生物体内不仅作为能量资源或结构材料,更重要的是还参与了生命现象中细胞的各种活动,具有多种多样的生物学功能。多糖的生物学功能与其一级结构及高级结构密切相关。本文以资源丰富的双低油菜籽饼粕为研究对象,利用生物大分子研究的最新技术和现代分离分析手段,对菜籽多糖进行分离纯化、理化性质及一级结构的研究。主要研究结果如下:
1.在保证菜籽多酚、菜籽蛋白和菜籽植酸得率的同时,采用水提醇沉法提取分离菜籽多糖。经正交试验得到菜籽粗多糖RSPS的最优化提取工艺条件为:100℃条件下以1:25的料液比浸提菜籽饼粕4小时,此时,RSPS的得率为2.8%。
2.通过离子交换和葡聚糖凝胶二级柱层析纯化方法获得菜籽多糖相对均一的组分RSPS1-3。葡聚糖凝胶柱层析和聚丙烯酰胺凝胶电泳实验表明RSPS1-3是分子量分布较为均一的糖蛋白缀合物。经测定RSPS1-3中中性糖含量为51.4%、葡萄糖醛酸含量为39.2%、蛋白质含量为4.45%。凝胶渗透色谱(GPC)测定RSPS1-3的平均分子量为2.24×10~5Dal。
3.经... |
| 【论文题纲】 |
|
摘要 |
6-8 |
|
ABSTRACT |
8-10 |
|
第一章 文献综述 |
10-20 |
|
1 菜籽饼粕及多糖的研究进展 |
10-18 |
|
1．1 菜籽饼粕的研究进展 |
10-12 |
|
1．1．1 我国油菜的发展现状 |
10 |
|
1．1．2 菜籽饼粕的化学成份 |
10-12 |
|
1．1．3 菜籽饼粕利用的研究 |
12 |
|
1．2 多糖的研究进展 |
12-18 |
|
1．2．1 多糖概述 |
13 |
|
1．2．2 多糖的结构 |
13-14 |
|
1．2．3 多糖的提取、分离和纯化 |
14-15 |
|
1．2．4 多糖结构的研究 |
15-16 |
|
1．2．5 多糖的生物活性 |
16-18 |
|
1．2．6 多糖的发展前景 |
18 |
|
2 课题构想 |
18-20 |
|
2．1 研究目的和意义 |
18-19 |
|
2．2 研究的主要内容 |
19-20 |
|
第二章 菜籽粗多糖 RSPS的提取研究 |
20-26 |
|
1 引言 |
20 |
|
2 材料与方法 |
20-22 |
|
2．1 实验材料 |
20-21 |
|
2．1．1 原料 |
20 |
|
2．1．2 主要试剂 |
20 |
|
2．1．3 主要仪器 |
20-21 |
|
2．2 实验方法 |
21-22 |
|
2．2．1 菜籽饼粕基本成分测定 |
21 |
|
2．2．2 菜籽多糖提取工艺流程 |
21 |
|
2．2．3 菜籽饼粕前处理 |
21 |
|
2．2．4 菜籽粗多糖的提取 |
21-22 |
|
2．2．5 Sevag法脱蛋白 |
22 |
|
3 结果与分析 |
22-25 |
|
3．1 菜籽饼粕基本成分测定 |
22 |
|
3．2 浸提条件对菜籽多糖提取率的影响 |
22-24 |
|
3．2．1 浸提时间的影响 |
24 |
|
3．2．2 浸提料液比的影响 |
24 |
|
3．2．3 浸提温度的影响 |
24 |
|
3．2．4 浸提次数的影响 |
24 |
|
3．3 正交试验(L_9(3~3)) |
24-25 |
|
3．4 Sevag法脱蛋白 |
25 |
|
4 结论 |
25-26 |
|
第三章 菜籽多糖 RSPS1-3的分离纯化及理化性质研究 |
26-34 |
|
1 引言 |
26 |
|
2 材料与方法 |
26-29 |
|
2．1 实验材料 |
26-27 |
|
2．1．1 原料 |
26 |
|
2．1．2 主要试剂 |
26-27 |
|
2．1．3 主要仪器 |
27 |
|
2．2 实验方法 |
27-29 |
|
2．2．1 菜籽多糖的分离纯化路线 |
27-28 |
|
2．2．2 菜籽多糖的分级纯化 |
28 |
|
2．2．3 菜籽多糖的纯度鉴定 |
28-29 |
|
2．2．4 菜籽多糖组成成份分析 |
29 |
|
2．2．5 菜籽多糖基本理化性质分析 |
29 |
|
3 结果与分析 |
29-33 |
|
3．1 菜籽多糖的分级纯化 |
29-31 |
|
3．1．1 菜籽多糖 DEAE-Sephadex A-25柱层析 |
29-30 |
|
3．1．2 菜籽多糖 Sephadex G-100凝胶柱层析 |
30-31 |
|
3．2 菜籽多糖的纯度鉴定 |
31-32 |
|
3．2．1 Sephadex G-100凝胶柱层析 |
31 |
|
3．2．2 聚丙烯酰胺凝胶电泳 |
31-32 |
|
3．3 菜籽多糖组成成分分析 |
32 |
|
3．4 菜籽多糖的基本理化性质分析 |
32-33 |
|
4 结论 |
33-34 |
|
第四章 菜籽多糖 RSPS1-3的一级结构表征及二级结构初探 |
34-50 |
|
1 引言 |
34 |
|
2 材料与方法 |
34-38 |
|
2．1 实验材料 |
34-35 |
|
2．1．1 原料 |
34 |
|
2．1．2 主要试剂 |
34-35 |
|
2．1．3 主要仪器 |
35 |
|
2．2 实验方法 |
35-38 |
|
2．2．1 光谱分析 |
35 |
|
2．2．2 单糖组成成份分析 |
35-37 |
|
2．2．3 氨基酸组成分析 |
37 |
|
2．2．4 糖肽键连接方式分析 |
37 |
|
2．2．5 相邻单糖基连接方式分析 |
37 |
|
2．2．6 相对分子量测定 |
37 |
|
2．2．7 刚果红试验 |
37-38 |
|
3 结果与分析 |
38-48 |
|
3．1 光谱分析 |
38-40 |
|
3．1．1 紫外光谱分析 |
38-39 |
|
3．1．2 红外光谱分析 |
39-40 |
|
3．2 单糖组成成分分析 |
40-46 |
|
3．2．1 薄层硅胶层析 |
40-41 |
|
3．2．2 气相色谱 |
41-46 |
|
3．3 氨基酸组成分析 |
46-47 |
|
3．4 糖肽键组成分析 |
47 |
|
3．5 相邻单糖基连接方式分析 |
47 |
|
3．6 相对分子量测定 |
47 |
|
3．7 刚果红试验 |
47-48 |
|
4 结论 |
48-50 |
|
第五章 结论 |
50-51 |
|
参考文献 |
51-56 |
|
致谢 |
56 |
|
| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.78054 |
