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功能性微生物菌株的筛选及组合菌群活性研究

作者：孙亚凯 Publish: 2007-5-29 Hits:-

【中文题名】

功能性微生物菌株的筛选及组合菌群活性研究

【英文题名】

The Screen of the Functional Microbial Strains and the Study on Activities of Microbial Combination Communities

【学科专业】

化学工艺

【论文级别】

硕士论文

【投稿时间】

2007-5-29

【中关键词】

复合微生物肥料,微生物功能菌群,溶磷微生物,固氮微生物,解钾微生物,

【英关键词】

Compound Microorganism Fertilizer,Microbial Functional Community,Phosphate Solubilizing Microorganism,Nitrogen Fixation Microorganism,Potassium Dissolving Microorganism,

【分类导航】

农业科学>农业基础科学>肥料学>微生物肥料（细菌肥料）>>

【论文摘要】

随着生物技术的进展,复合微生物肥料成为农业微生物技术中普遍关注的课题。功能微生物菌群作为复合微生物肥料的核心部分,是微生物肥料生产中的关键技术。本文自行筛选出功能微生物菌群中的重要组成部分溶磷、固氮、解钾菌,分别对其活力进行了研究,并且进行了简单的混合发酵实验,初步确定出效果良好的菌群组合。通过Pikovskava解无机磷培养基筛选得到了11株溶磷微生物,液体发酵实验表明其中4株菌Bmp5、Bmp6、Bmp7和Fmp9具有较高的溶磷活力。以巨大芽孢杆菌As1.223和荧光假单胞菌As1.867作为对照菌株,在液体发酵条件下,考察了四株菌对磷酸钙、磷酸铁、磷酸铝、磷酸氢钙、卵磷脂五种不同磷源的溶解作用。结果表明四株供试菌株对磷酸钙、磷酸铝、磷酸氢钙溶解能力明显高于磷酸铁、卵磷脂。以磷酸钙为磷源,Fmp9的溶磷量比As1.867和As1.223分别高出约92%和48%;以磷酸氢钙为磷源物质,Bmp5的溶磷量是As1.223的2.17倍,而Bmp6溶磷量高达785.51mg/L,比As1.867高出约35%,为As1.223的3.43倍;以磷酸铝为磷源时,As1.223的溶磷量明显高于...

【论文题纲】

中文摘要	3-4
ABSTRACT	4-10
前言	10-11
第一章文献综述	11-32
1.1 土壤微生物及其在农业生产中的作用	11-12
1.2 微生物肥料概述	12-15
1.2.1 微生物肥料的含义	12-13
1.2.2 微生物肥料的特点	13
1.2.3 微生物肥料的主要类型	13
1.2.4 微生物肥料的发展概况	13-14
1.2.5 微生物肥料的发展中存在的问题及其研究趋势	14-15
1.3 溶磷微生物的研究进展	15-20
1.3.1 土壤中磷的形态、转化及其有效性	15-17
1.3.1.1 无机磷的生物转化	16
1.3.1.2 有机磷的生物转化	16-17
1.3.1.3 土壤微生物生物量磷与磷素循环	17
1.3.2 溶磷微生物在土壤中的种类、数量及生态分布	17-19
1.3.3 溶磷微生物的解磷机理	19
1.3.3.1 分泌有机酸溶磷	19
1.3.3.2 分泌磷酸酶溶磷	19
1.3.3.3 释放H~+质子溶磷	19
1.3.4 解磷菌制剂应用研究及其发展趋势	19-20
1.4 固氮微生物研究进展	20-27
1.4.1 微生物在氮素循环中的作用	20-21
1.4.2 生物固氮技术简介	21-22
1.4.3 固氮微生物的种类	22-24
1.4.4 固氮的生化机制	24-25
1.4.5 固氮微生物的应用及生物固氮研究展望	25-27
1.5 解钾微生物研究进展	27-29
1.5.1 土壤微生物与土壤钾素的形态转变	27
1.5.2 解钾微生物的概述及研究现状	27-28
1.5.3 硅酸盐细菌解钾机理	28-29
1.5.4 硅酸盐细菌的研究趋势	29
1.6 复合微生物肥料研究	29-32
第二章实验部分	32-48
2.1 实验原料、试剂及仪器设备	32-34
2.1.1 实验过程所用的原料	32
2.1.1.1 土壤样品	32
2.1.1.2 培养基	32
2.1.1.3 对照菌株	32
2.1.2 试剂	32-34
2.1.3 实验仪器	34
2.2 实验方法	34-38
2.2.1 溶磷活力分析方法－钼锑抗比色法	34-36
2.2.1.1 实验原理	34
2.2.1.2 实验所用溶液	34-35
2.2.1.3 工作曲线的绘制	35
2.2.1.4 菌液的制备	35
2.2.1.5 样品的测试	35-36
2.2.1.6 结果计算	36
2.2.2 固氮菌固氮活力研究方法－全氮比色测定法	36-38
2.2.2.1 实验原理	36
2.2.2.2 实验所用试剂	36-37
2.2.2.3 工作曲线的绘制	37
2.2.2.4 菌液的制备	37
2.2.2.5 样品测试	37
2.2.2.6 结果计算	37-38
2.2.3 解钾活力的测定－原子发射光谱法	38
2.2.3.1 实验原理	38
2.2.3.2 实验步骤	38
2.3 溶磷微生物的筛选及活力研究	38-43
2.3.1 溶磷微生物的筛选	38-40
2.3.2 四株高效溶磷微生物形态观察及活力研究	40-41
2.3.2.1 四株高效溶磷微生物形态观察	40
2.3.2.2 菌株活力研究	40-41
2.3.2.3 溶磷微生物混合培养研究	41
2.3.3 Bmp5 的鉴定及培养条件优化研究	41-43
2.3.3.1 Bmp5 的形态观察、生理生化特性及鉴定	41
2.3.3.2 Bmp5 培养条件优化	41-43
2.3.3.2.1 培养基初始pH值	41-42
2.3.3.2.2 碳源	42
2.3.3.2.3 氮源	42-43
2.2.3.2.4 温度	43
2.3.3.2.5 金属离子	43
2.4 固氮菌的分离及活力研究	43-45
2.4.1 实验材料、试剂	43-44
2.4.2 固氮菌的筛选纯化及保存	44
2.4.3 固氮活力的测定	44-45
2.5 解钾微生物的筛选及活力研究	45-46
2.5.1 实验材料、试剂	45
2.5.2 解钾菌的筛选纯化及保存	45
2.5.3 解钾微生物活力测定	45-46
2.6 微生物菌群组合及其活力测定	46-48
2.6.1 实验目的	46
2.6.2 菌群组合	46
2.6.3 固氮活力的测定	46
2.6.4 解磷活力的测定	46
2.6.5 解钾活力的测定	46-48
第三章实验结果与讨论	48-71
3.1 标准曲线的绘制	48-51
3.1.1 磷标准曲线的绘制	48-49
3.1.1.1 适宜测定波长的选择	48
3.1.1.2 磷标准曲线的绘制	48-49
3.1.2 氮标准曲线的绘制	49-50
3.1.2.1 适宜测定波长的选择	49
3.1.2.2 氮标准曲线的绘制	49-50
3.1.3 钾标准曲线的绘制	50-51
3.2 溶磷微生物的分离及活力比较	51
3.3 四株高效溶磷微生物活力比较结果	51-60
3.3.1 菌株形态观察	51-53
3.3.2 菌株活力比较研究结果	53-58
3.3.2.1 磷酸钙为磷源时溶磷活力	53
3.3.2.2 磷酸铝为磷源时溶磷活力	53-54
3.3.2.3 磷酸氢钙为磷源时溶磷活力	54-55
3.3.2.4 磷酸铁为磷源时溶磷活力	55
3.3.2.5 卵磷脂为磷源时溶磷活力	55-56
3.3.2.6 小结	56-58
3.3.3 培养液的最终pH值	58
3.3.4 菌株混合培养结果	58-60
3.3.5 小结	60
3.4 Bmp5 的鉴定及培养条件优化研究结果	60-67
3.4.1 菌株的形态观察、生理生化特性及分类鉴定	60
3.4.2 Bmp5 培养条件的优化	60-67
3.4.2.1 培养基初始pH值对Bmp5 溶磷能力的影响	60-61
3.4.2.2 碳源对Bmp5 溶磷能力的影响	61-63
3.4.2.3 氮源对Bmp5 溶磷能力的影响	63-64
3.4.2.4 温度对Bmp5 溶磷能力的影响	64-65
3.4.2.5 金属离子对Bmp5 溶磷能力的影响	65-66
3.4.2.6 小结	66-67
3.5 固氮微生物活力	67-68
3.5.1 固氮微生物的筛选及纯化	67
3.5.2 固氮微生物的活力研究	67-68
3.6 微生物解钾活力	68
3.6.1 解钾微生物的筛选	68
3.6.2 解钾微生物的活力研究	68
3.7 微生物组合菌群及其活力测定结果	68-71
第四章结论	71-72
参考文献	72-77
发表论文和科研情况说明	77-78
附录	78-84
致谢	84

【DOI】

LunWen.ID:2.2008.147399



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