| 【中文题名】 | 微生物转化法制备非索非那定的研究 |
| 【英文题名】 | Study on the Preparation of Fexofenadine by Microbial Transformation |
| 【学科专业】 | 微生物与生化药学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2005-9-30 |
| 【中关键词】 | H1受体拮抗剂,微生物转化,非索非那定,特非那定,菌种选育,分离纯化 |
| 【英关键词】 | H1 receptor antagonist,Microbial transformation,fexofenadine,terfenadine,Strain breeding,Purification, |
| 【分类导航】 | 医药、卫生>药学>药剂学>制剂学>> |
| 【论文摘要】 | 全球过敏性疾病的发生率持续增加,给人们的生活质量带来了很大的影响。第二代H_1
受体拮抗剂是目前治疗过敏性疾病的首选药物。非索非那定是一种新型第二代H_1受体拮抗
剂,于1996年在美国上市,临床上用于治疗季节性过敏性鼻炎与慢性特发性荨麻疹。几
年来的用药情况表明,该药临床疗效好,选择性强,作用持久,副作用小,无镇静作用,
市场前景看好。非索非那定可以通过化学合成或微生物转化的方法得到。
本文用微生物转化的方法制备非索非那定,即在微生物生长的过程中添加非索非那定
的前体特非那定,在微生物的酶促反应下使之转化成非索非那定。通过紫外诱变和自然选
育,从2400株菌株中筛选到一株高转化菌株(普拉特链霉菌)S. platensis-SIPI-L-076,转化
率为81.4%,是出发菌株S.platensis-SIPI-C-0309的1.53倍。对转化培养基和转化条件进
行了优化,使得摇瓶中高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076的转化率达到了90%。在此基础
上,对玻璃罐中的转化条件进行了初步研究,为转化工艺的进一步优化提供一定的指导,
结果发酵罐中的... |
| 【论文题纲】 |
|
摘要 |
5-6 |
|
Abstract |
6-7 |
|
英文缩写说明 |
7-8 |
|
第一章 文献综述 |
8-22 |
|
1.1 抗过敏药物概述 |
8-12 |
|
1.1.1 过敏反应 |
8 |
|
1.1.2 组胺及组胺受体 |
8-9 |
|
1.1.3 组胺H_1受体拮抗剂及其现状 |
9-12 |
|
1.2 特非那定—非索非那定的前体药物介绍 |
12-13 |
|
1.3 非索非那定的研究现状 |
13-20 |
|
1.3.1 非索非那定理化性质 |
14 |
|
1.3.2 非索非那定的药效学与药动学 |
14 |
|
1.3.3 非索非那定不良反应与药物相互作用 |
14-15 |
|
1.3.4 非索非那定的制备 |
15-20 |
|
1.3.5 非索非那定的市场前景 |
20 |
|
1.4 本课题的目的和意义 |
20-22 |
|
第二章 非索非那定转化菌种的菌种选育 |
22-31 |
|
2.1 仪器和材料 |
22-23 |
|
2.2 实验方法 |
23-25 |
|
2.2.1 底物的制备 |
23 |
|
2.2.2 转化方法 |
23 |
|
2.2.3 转化率的测定 |
23-24 |
|
2.2.4 其它发酵参数的测定 |
24 |
|
2.2.5 紫外诱变(UV)处理 |
24 |
|
2.2.6 菌种选育流程 |
24-25 |
|
2.3 实验结果 |
25-30 |
|
2.3.1 转化率的测定 |
25-28 |
|
2.3.2 出发菌株的复壮和纯化 |
28 |
|
2.3.3 UV诱变结果 |
28-30 |
|
2.3.4 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076的遗传稳定性 |
30 |
|
2.4 讨论 |
30-31 |
|
第三章 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076转化方法的研究 |
31-52 |
|
3.1 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076培养基的优化 |
31-39 |
|
3.1.1 仪器和材料 |
31 |
|
3.1.1.1 主要仪器 |
31 |
|
3.1.1.2 菌种 |
31 |
|
3.1.1.3 培养基和培养条件 |
31 |
|
3.1.2 实验方法 |
31-32 |
|
3.1.2.1 发酵参数测定 |
31 |
|
3.1.2.2 培养基的优化 |
31-32 |
|
3.1.3 实验结果 |
32-38 |
|
3.1.3.1 碳源试验结果 |
32-33 |
|
3.1.3.2 氮源试验结果 |
33-36 |
|
3.1.3.3 磷酸盐试验结果 |
36-37 |
|
3.1.3.4 正交试验结果 |
37-38 |
|
3.1.4 讨论 |
38-39 |
|
3.2 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076转化条件的研究 |
39-47 |
|
3.2.1 实验方法 |
39-40 |
|
3.2.1.1 pH值试验 |
39 |
|
3.2.1.2 转化温度试验 |
39 |
|
3.2.1.3 种龄试验 |
39 |
|
3.2.1.4 接种量试验 |
39 |
|
3.2.1.5 装量试验 |
39 |
|
3.2.1.6 底物加入浓度试验 |
39-40 |
|
3.2.1.7 底物加入时间试验 |
40 |
|
3.2.1.8 摇瓶转化的代谢曲线 |
40 |
|
3.2.2 实验结果 |
40-46 |
|
3.2.2.1 pH值试验结果 |
40-41 |
|
3.2.2.2 温度试验结果 |
41 |
|
3.2.2.3 种龄试验结果 |
41-42 |
|
3.2.2.4 接种量试验结果 |
42 |
|
3.2.2.5 装量试验结果 |
42-43 |
|
3.2.2.6 底物加入量试验结果 |
43 |
|
3.2.2.7 底物加入时间选择结果 |
43-44 |
|
3.2.2.8 摇瓶转化的代谢曲线 |
44-46 |
|
3.2.3 讨论 |
46-47 |
|
3.3 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076玻璃罐转化的初步研究 |
47-52 |
|
3.3.1 仪器和材料 |
47 |
|
3.3.1.1 菌种 |
47 |
|
3.3.1.2 主要仪器 |
47 |
|
3.3.1.3 培养基与转化条件 |
47 |
|
3.3.2 实验方法 |
47-48 |
|
3.3.2.1 控制溶氧对转化的影响 |
47-48 |
|
3.3.2.2 pH对转化的影响 |
48 |
|
3.3.2.3 终点的确定 |
48 |
|
3.3.2.4 发酵转化代谢曲线 |
48 |
|
3.3.3 实验结果 |
48-51 |
|
3.3.3.1 溶氧对转化的影响 |
48-49 |
|
3.3.3.2 pH对转化的影响 |
49-50 |
|
3.3.3.3 玻璃罐转化代谢曲线和终点的确定 |
50 |
|
3.3.3.4 摇瓶转化与玻璃罐转化的比较 |
50-51 |
|
3.3.4 讨论 |
51-52 |
|
第四章 非索非那定分离纯化的初步研究 |
52-61 |
|
4.1 仪器和材料 |
52 |
|
4.2 实验方法 |
52-55 |
|
4.2.1 检测方法 |
52 |
|
4.2.2 非索非那定的分离纯化 |
52-55 |
|
4.3 实验结果 |
55-59 |
|
4.3.1 柱层析结果 |
55-56 |
|
4.3.2 非索非那定分离纯化结果 |
56-57 |
|
4.3.3 非索非那定的结构确认 |
57-59 |
|
4.4 讨论 |
59-61 |
|
结论 |
61-62 |
|
参考文献 |
62-65 |
|
致谢 |
65 |
|
| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.198463 |