微生物转化法制备非索非那定的研究
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微生物转化法制备非索非那定的研究
作者:刘雪峰 Publish: 2005-9-30 Hits:-
【中文题名】 微生物转化法制备非索非那定的研究
【英文题名】 Study on the Preparation of Fexofenadine by Microbial Transformation
【学科专业】 微生物与生化药学
【论文级别】 硕士论文
【投稿时间】 2005-9-30
【中关键词】 H1受体拮抗剂,微生物转化,非索非那定,特非那定,菌种选育,分离纯化
【英关键词】 H1 receptor antagonist,Microbial transformation,fexofenadine,terfenadine,Strain breeding,Purification,
【分类导航】 医药、卫生>药学>药剂学>制剂学>>
【论文摘要】 全球过敏性疾病的发生率持续增加,给人们的生活质量带来了很大的影响。第二代H_1 受体拮抗剂是目前治疗过敏性疾病的首选药物。非索非那定是一种新型第二代H_1受体拮抗 剂,于1996年在美国上市,临床上用于治疗季节性过敏性鼻炎与慢性特发性荨麻疹。几 年来的用药情况表明,该药临床疗效好,选择性强,作用持久,副作用小,无镇静作用, 市场前景看好。非索非那定可以通过化学合成或微生物转化的方法得到。 本文用微生物转化的方法制备非索非那定,即在微生物生长的过程中添加非索非那定 的前体特非那定,在微生物的酶促反应下使之转化成非索非那定。通过紫外诱变和自然选 育,从2400株菌株中筛选到一株高转化菌株(普拉特链霉菌)S. platensis-SIPI-L-076,转化 率为81.4%,是出发菌株S.platensis-SIPI-C-0309的1.53倍。对转化培养基和转化条件进 行了优化,使得摇瓶中高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076的转化率达到了90%。在此基础 上,对玻璃罐中的转化条件进行了初步研究,为转化工艺的进一步优化提供一定的指导, 结果发酵罐中的...
【论文题纲】
摘要 5-6
Abstract 6-7
英文缩写说明 7-8
第一章 文献综述 8-22
1.1 抗过敏药物概述 8-12
1.1.1 过敏反应 8
1.1.2 组胺及组胺受体 8-9
1.1.3 组胺H_1受体拮抗剂及其现状 9-12
1.2 特非那定—非索非那定的前体药物介绍 12-13
1.3 非索非那定的研究现状 13-20
1.3.1 非索非那定理化性质 14
1.3.2 非索非那定的药效学与药动学 14
1.3.3 非索非那定不良反应与药物相互作用 14-15
1.3.4 非索非那定的制备 15-20
1.3.5 非索非那定的市场前景 20
1.4 本课题的目的和意义 20-22
第二章 非索非那定转化菌种的菌种选育 22-31
2.1 仪器和材料 22-23
2.2 实验方法 23-25
2.2.1 底物的制备 23
2.2.2 转化方法 23
2.2.3 转化率的测定 23-24
2.2.4 其它发酵参数的测定 24
2.2.5 紫外诱变(UV)处理 24
2.2.6 菌种选育流程 24-25
2.3 实验结果 25-30
2.3.1 转化率的测定 25-28
2.3.2 出发菌株的复壮和纯化 28
2.3.3 UV诱变结果 28-30
2.3.4 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076的遗传稳定性 30
2.4 讨论 30-31
第三章 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076转化方法的研究 31-52
3.1 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076培养基的优化 31-39
3.1.1 仪器和材料 31
3.1.1.1 主要仪器 31
3.1.1.2 菌种 31
3.1.1.3 培养基和培养条件 31
3.1.2 实验方法 31-32
3.1.2.1 发酵参数测定 31
3.1.2.2 培养基的优化 31-32
3.1.3 实验结果 32-38
3.1.3.1 碳源试验结果 32-33
3.1.3.2 氮源试验结果 33-36
3.1.3.3 磷酸盐试验结果 36-37
3.1.3.4 正交试验结果 37-38
3.1.4 讨论 38-39
3.2 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076转化条件的研究 39-47
3.2.1 实验方法 39-40
3.2.1.1 pH值试验 39
3.2.1.2 转化温度试验 39
3.2.1.3 种龄试验 39
3.2.1.4 接种量试验 39
3.2.1.5 装量试验 39
3.2.1.6 底物加入浓度试验 39-40
3.2.1.7 底物加入时间试验 40
3.2.1.8 摇瓶转化的代谢曲线 40
3.2.2 实验结果 40-46
3.2.2.1 pH值试验结果 40-41
3.2.2.2 温度试验结果 41
3.2.2.3 种龄试验结果 41-42
3.2.2.4 接种量试验结果 42
3.2.2.5 装量试验结果 42-43
3.2.2.6 底物加入量试验结果 43
3.2.2.7 底物加入时间选择结果 43-44
3.2.2.8 摇瓶转化的代谢曲线 44-46
3.2.3 讨论 46-47
3.3 高转化菌株S.platensis-SIPI-L-076玻璃罐转化的初步研究 47-52
3.3.1 仪器和材料 47
3.3.1.1 菌种 47
3.3.1.2 主要仪器 47
3.3.1.3 培养基与转化条件 47
3.3.2 实验方法 47-48
3.3.2.1 控制溶氧对转化的影响 47-48
3.3.2.2 pH对转化的影响 48
3.3.2.3 终点的确定 48
3.3.2.4 发酵转化代谢曲线 48
3.3.3 实验结果 48-51
3.3.3.1 溶氧对转化的影响 48-49
3.3.3.2 pH对转化的影响 49-50
3.3.3.3 玻璃罐转化代谢曲线和终点的确定 50
3.3.3.4 摇瓶转化与玻璃罐转化的比较 50-51
3.3.4 讨论 51-52
第四章 非索非那定分离纯化的初步研究 52-61
4.1 仪器和材料 52
4.2 实验方法 52-55
4.2.1 检测方法 52
4.2.2 非索非那定的分离纯化 52-55
4.3 实验结果 55-59
4.3.1 柱层析结果 55-56
4.3.2 非索非那定分离纯化结果 56-57
4.3.3 非索非那定的结构确认 57-59
4.4 讨论 59-61
结论 61-62
参考文献 62-65
致谢 65
【DOI】 LunWen.ID:2.2008.198463
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