| 【中文题名】 | 肝素寡糖的制备、结构分析及其抗哮喘分子作用机制研究 |
| 【英文题名】 | Heparin-Derived Oligosaccharides Preparation, Structure Analysis and Their Anti-Asthma Molecular Action Mechanisms |
| 【学科专业】 | 微生物与生化药学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2005-10-17 |
| 【中关键词】 | 肝素寡糖,结构,哮喘,白细胞介素-4,白细胞介素-5,免疫球蛋白E |
| 【英关键词】 | Heparin-derived oligosaccharide,Structure,Asthma,IL-4,IL-5,IgE,CD23,NF-κB,ATR-FTIR, |
| 【分类导航】 | 医药、卫生>药学>药剂学>制剂学>> |
| 【论文摘要】 | 肝素(Heparin)属于糖胺聚糖类化合物,分子中主要由糖醛酸(艾杜糖醛酸和葡糖醛酸)和葡糖胺以及它们的硫酸化和乙酰化的衍生物以1→4糖苷键连接而成的直链多糖链化合物,M_r分布范围3kD~30kD。肝素寡糖是采用不同降解方法降解肝素获得的平均M_r在1kD~4kD的寡糖片段。不同降解方法所得肝素寡糖具有不同的结构,从而具有不同的生物学活性。研究发现肝素除了具有抗血栓和抗凝血活性外,还具有抑制平滑肌增生、抗炎症、抗肿瘤等生物学功能。
哮喘是一种多炎症细胞、介质和细胞因子参与的慢性炎症性气道疾病,伴有气道高反应性和气道阻塞症状。白细胞介素-4(Interleukin-4,IL-4)和白细胞介素-5(Interleukin-5,IL-5)是哮喘炎症过程发生的重要因子。哮喘病的一个重要特征就是IgE的增高,IgE能结合炎症细胞,在过敏原诱导下这些炎症细胞释放炎症介质,从而增强气道高反应性。
炎症过程中的信号转导是炎症发生的重要途径,核转录因子-κB(Nuclear factor-κB,NF-κB)能调控炎性蛋白的合成,参与哮喘的炎症反应。
本课题探讨了不同结构的肝素寡糖对哮喘炎症... |
| 【论文题纲】 |
|
摘要 |
10-14 |
|
ABSTRACT |
14-19 |
|
符号说明 |
19-21 |
|
第一章 前言 |
21-32 |
|
1 哮喘病理机制 |
22-26 |
|
1.1 Th1/Th2失衡 |
22-23 |
|
1.2 IL-4与哮喘 |
23-24 |
|
1.3 IL-5与哮喘 |
24-25 |
|
1.4 IgE与哮喘 |
25 |
|
1.5 CD23与哮喘 |
25-26 |
|
1.6 NF-κB与哮喘 |
26 |
|
2 肝素与哮喘的防治 |
26-30 |
|
2.1 肝素与 IL-4 |
27-28 |
|
2.2 肝素与 IL-5 |
28-29 |
|
2.3 肝素与 IgD |
29 |
|
2.4 肝素与 NF-κB |
29-30 |
|
3 本课题已有的研究基础 |
30 |
|
4 本课题拟解决的问题 |
30-32 |
|
第二章 肝素寡糖的分离、纯化与筛选 |
32-47 |
|
1 材料 |
32 |
|
1.1 材料和试剂 |
32 |
|
1.2 仪器 |
32 |
|
2 方法 |
32-34 |
|
2.1 肝素寡糖的分离、纯化 |
32-33 |
|
2.1.1 Superdex 30凝胶柱层析分离肝素寡糖 |
32-33 |
|
2.1.2 QFF离子交换色谱分离肝素寡糖 |
33 |
|
2.1.3 Spherisorb SAX离子交换色谱分离肝素寡糖 |
33 |
|
2.2 PAGE筛选肝素寡糖 |
33-34 |
|
2.2.1 缓冲液的配制 |
33-34 |
|
2.2.2 制胶 |
34 |
|
2.2.3 电泳 |
34 |
|
2.2.4 染色与脱色 |
34 |
|
3 结果 |
34-45 |
|
3.1 肝素寡糖分离纯化的结果 |
34-41 |
|
3.1.1 Superdex 30分离肝素寡糖的结果 |
34-36 |
|
3.1.2 Superdex 30二次分离肝素寡糖的结果 |
36-37 |
|
3.1.3 QFF分离肝素寡糖的结果 |
37-39 |
|
3.1.4 Spherisorb SAX分离肝素寡糖的结果 |
39-41 |
|
3.2 肝素寡糖样品的电泳结果 |
41-45 |
|
3.2.1 三种方法降解所得Olig及凝胶分离后的 PAGE电泳结果 |
41-42 |
|
3.2.2 亚硝酸降解肝素寡糖样品的 PAGE结果 |
42-43 |
|
3.2.3 过氧化氢降解肝素寡糖样品的PAGE结果 |
43 |
|
3.2.4 β-消除降解肝素寡糖样品的PAGE结果 |
43-45 |
|
4 讨论 |
45-46 |
|
5 小结 |
46-47 |
|
第三章 肝素寡糖的结构研究 |
47-57 |
|
1 材料 |
47 |
|
1.1 材料与试剂 |
47 |
|
1.2 仪器 |
47 |
|
2 方法 |
47-49 |
|
2.1 肝素寡糖的红外光谱测定 |
47-48 |
|
2.2 肝素寡糖核磁共振图谱测定 |
48 |
|
2.3 双糖分析 |
48-49 |
|
2.3.1 裂解酶的处理 |
48 |
|
2.3.2 样品的消化 |
48 |
|
2.3.3 HPLC分析 |
48-49 |
|
3 结果 |
49-55 |
|
3.1 肝素寡糖红外光谱测定结果 |
49 |
|
3.2 肝素寡糖核磁共振图谱分析结果 |
49-52 |
|
3.2.1 肝素寡糖~1H-NMR分析结果 |
50 |
|
3.2.2 肝素寡糖~(13)C-NMR分析结果 |
50-52 |
|
3.3 双糖分析结果 |
52-55 |
|
3.3.1 标准品混合物 |
52 |
|
3.3.2 肝素寡糖双糖分析结果 |
52-55 |
|
4 讨论 |
55-56 |
|
5 小结 |
56-57 |
|
第四章 肝素寡糖对mIL-4和mIL-5分泌的影响 |
57-71 |
|
1 材料 |
57 |
|
1.1 试剂 |
57 |
|
1.2 仪器 |
57 |
|
2 方法 |
57-60 |
|
2.1 小鼠哮喘模型的建立 |
57-58 |
|
2.1.1 实验动物 |
57 |
|
2.1.2 实验动物分组 |
57-58 |
|
2.1.3 小鼠哮喘模型的复制 |
58 |
|
2.2 观察肺组织形态学改变 |
58 |
|
2.3 小鼠脾淋巴细胞悬液的制备和培养 |
58-59 |
|
2.4 细胞因子的测定 |
59-60 |
|
2.4.1 mIL-4含量测定 |
59 |
|
2.4.2 mIL-5含量测定 |
59-60 |
|
2.5 统计学方法 |
60 |
|
3 结果 |
60-68 |
|
3.1 病理 |
60-62 |
|
3.2 小鼠脾淋巴细胞培养液mIL-4含量 |
62-64 |
|
3.2.1 mIL-4标准曲线的测定 |
62-63 |
|
3.2.2 mIL-4的表达水平 |
63-64 |
|
3.3 小鼠脾淋巴细胞培养上清液中mIL-5含量测定 |
64-66 |
|
3.3.1 mIL-5标准曲线的测定 |
64-65 |
|
3.3.2 mIL-5的表达水平 |
65-66 |
|
3.4 不同肝素寡糖浓度对mIL-4、mIL-5含量的影响 |
66-68 |
|
3.4.1 三种肝素寡糖对mIL-4含量影响测定 |
66-67 |
|
3.4.2 三种肝素寡糖对mIL-5含量影响测定 |
67-68 |
|
4 讨论 |
68-70 |
|
5 小结 |
70-71 |
|
第五章 肝素寡糖对哮喘相关炎症因子表达的影响 |
71-86 |
|
1 材料 |
71 |
|
1.1 样品和试剂 |
71 |
|
1.2 仪器 |
71 |
|
2 方法 |
71-75 |
|
2.1 小鼠哮喘模型的建立 |
71-72 |
|
2.1.1 实验动物 |
71 |
|
2.1.2 实验动物分组 |
71-72 |
|
2.1.3 小鼠哮喘模型的复制 |
72 |
|
2.1.4 观察肺组织形态学改变 |
72 |
|
2.2 脾淋巴细胞悬液的制备和培养 |
72 |
|
2.3 哮喘炎症因子活性的测定 |
72-75 |
|
2.3.1 脾淋巴细胞培养上清液中mouse IgE含量测定 |
72-73 |
|
2.3.2 小鼠脾淋巴细胞 CD23阳性率流式测定 |
73-74 |
|
2.3.3 小鼠肺组织 NF-κB p65阳性率测定 |
74-75 |
|
3 结果 |
75-83 |
|
3.1 小鼠脾淋巴细胞悬液 IgE测定结果 |
75-77 |
|
3.1.1 标准曲线的测定 |
75 |
|
3.1.2 小鼠脾淋巴细胞悬液 IgE表达水平 |
75-77 |
|
3.2 小鼠脾淋巴细胞 CD23阳性率测定结果 |
77-80 |
|
3.2.1 CD23在脾淋巴细胞的表达 |
77-79 |
|
3.2.2 CD23阳性率测定结果 |
79-80 |
|
3.3 NF-κB p65 的测定 |
80-83 |
|
3.3.1 NF-κB p65在小鼠肺组织的表达 |
80-81 |
|
3.3.2 NF-κB p65阳性率测定结果 |
81-83 |
|
4 讨论 |
83-84 |
|
5 小结 |
84-86 |
|
第六章 肝素寡糖与细胞因子的结合实验 |
86-103 |
|
1 材料 |
86 |
|
1.1 试剂 |
86 |
|
1.2 仪器 |
86 |
|
2 方法 |
86-88 |
|
2.1 酶联免疫测定法 |
86 |
|
2.1.1 肝素寡糖与细胞因子结合 |
86 |
|
2.1.2 细胞因子含量的测定 |
86 |
|
2.2 IL-4、IL-5和肝素寡糖的 ATR-FTIR测定 |
86-88 |
|
2.2.1 波谱采集 |
86-87 |
|
2.2.2 谱图分析 |
87-88 |
|
3 结果 |
88-98 |
|
3.1 酶联免疫测定肝素寡糖与 IL-4、IL-5含量 |
88-91 |
|
3.1.1 肝素寡糖与细胞因子结合最适浓度 |
88 |
|
3.1.2 三种肝素寡糖与 IL-4结合测定结果 |
88-90 |
|
3.1.3 三种肝素寡糖与 IL-5结合测定结果 |
90-91 |
|
3.2 肝素寡糖Olig BH.7与 IL-4、IL-5的 ATR-FTIR测定结果 |
91-98 |
|
3.2.1 肝素寡糖Olig BH.7与 IL-4结合 ATR-FTIR测定结果 |
91-94 |
|
3.2.2 肝素寡糖Olig BH.7与 IL-5结合 ATR-FTIR测定结果 |
94-98 |
|
4 讨论 |
98-102 |
|
5 小结 |
102-103 |
|
总结 |
103-105 |
|
附录 |
105-115 |
|
参考文献 |
115-125 |
|
致谢 |
125-126 |
|
攻读硕士学位期间发表的学术论文 |
126-127 |
|
学位论文评阅及答辩情况表 |
127 |
|
| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.198471 |