| 【中文题名】 | 吡喹酮脂质纳米粒的研究 |
| 【英文题名】 | Study of Lipid Nanoparticle Containing Praziquantel |
| 【学科专业】 | 药剂学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2007-9-29 |
| 【中关键词】 | 吡喹酮,固体脂质纳米粒,脂质体,口服生物利用度,, |
| 【英关键词】 | praziquantel (PZQ),Solid lipid nanoparticles,liposome,oral bioavailability, |
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| 【论文摘要】 |
吡喹酮是当前最有效、最安全和最广泛应用于现场防治的抗血吸虫病药物。但由于口服时肝首过效应的影响,导致其生物利用度非常低,限制了吡喹酮的临床疗效。因此,本文以吡喹酮为模型药物,对吡喹酮固体脂质纳米粒和吡喹酮脂质体进行了研究,旨在提高吡喹酮的口服生物利用度。
建立了以甲醇-水(70∶30,v/v)为流动相的高效液相色谱法测定药物的含量,方法简单,结果准确。并建立了测定脂质纳米粒包封率的葡聚糖微型凝胶柱法。
选择超声分散法制备吡喹酮固体脂质纳米粒(PZQ-SLN)。制备工艺单因素考察结果表明,超声强度和时间对粒径的影响较大;处方研究表明采用山嵛酸甘油酯和乙酸丁酯为脂质材料,豆磷脂/泊洛沙姆188/硬脂酸钠为复配乳化剂所得PZQ-SLN粒径小、包封率高。以包封率为指标,采用正交设计进行优化,确定了最佳处方组成,并对吡喹酮固体脂质纳米粒的制剂学性质进行了研究。透射电镜观察PZQ-SLN为较圆整的球形,粒度分布在100nm左右,平均ζ电位为-66.3mV,包封率在80%左右。药物释放结果显示吡喹酮在测定时间内释放较完全,药物释放符合Weibull方程。从释放曲线上可以较清楚的反映出药物从SLN中... |
| 【论文题纲】 |
|
摘要 |
12-14 |
|
ABSTRACT |
14-16 |
|
前言 |
16-26 |
|
1.固体脂质纳米粒的研究概况及进展 |
16-20 |
|
2.脂质体在提高药物口服吸收中的应用 |
20-21 |
|
3.吡喹酮的研究概况、立题依据及意义 |
21-22 |
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4.试验设计 |
22-23 |
|
参考文献 |
23-26 |
|
第一章 处方前研究及分析方法的建立 |
26-39 |
|
1 仪器和试药 |
26 |
|
2 方法和结果 |
26-37 |
|
2.1 吡喹酮体外分析方法的建立 |
26-30 |
|
2.1.1 检测波长的确立 |
26-27 |
|
2.1.2 色谱条件 |
27-28 |
|
2.1.3 专属性考察 |
28-29 |
|
2.1.4 标准曲线的制备 |
29 |
|
2.1.5 最低检测限 |
29 |
|
2.1.6 精密度试验 |
29-30 |
|
2.1.7 回收率试验 |
30 |
|
2.2 样品含量测定方法 |
30-31 |
|
2.3 吡喹酮基本理化性质的研究 |
31-33 |
|
2.3.1 溶解度的测定 |
31-32 |
|
2.3.2 吡喹酮热稳定性试验 |
32-33 |
|
2.4 脂质纳米粒包封率测定方法的建立 |
33-35 |
|
2.4.1 超速离心法测定包封率 |
33 |
|
2.4.2 葡聚糖微型凝胶柱法测定包封率 |
33-35 |
|
2.5 吡喹酮脂质体中磷脂含量测定方法的建立 |
35-37 |
|
2.5.1 溶液的配制 |
35 |
|
2.5.2 标准曲线的绘制 |
35-36 |
|
2.5.3 精密度试验 |
36 |
|
2.5.4 回收率试验 |
36-37 |
|
2.5.5 吡喹酮脂质体中磷脂含量的测定 |
37 |
|
3 讨论 |
37-38 |
|
4 本章小结 |
38 |
|
参考文献 |
38-39 |
|
第二章 吡喹酮固体脂质纳米粒的制备及理化性质的评价 |
39-58 |
|
1 仪器和试药 |
39 |
|
2 实验方法与结果 |
39-54 |
|
2.1 制备方法的选择 |
39-43 |
|
2.1.1 乳化-超声分散法 |
40-42 |
|
2.1.2 超声分散法 |
42-43 |
|
2.2 处方的优化 |
43-48 |
|
2.2.1 脂质材料的考察 |
43-45 |
|
2.2.2 乳化剂种类及用量选择 |
45-46 |
|
2.2.3 脂质材料浓度的考察 |
46 |
|
2.2.4 药物浓度的考察 |
46-47 |
|
2.2.5 正交实验设计 |
47-48 |
|
2.3 PZQ-SLN制剂学性质的评价 |
48-54 |
|
2.3.1 外观 |
48 |
|
2.3.2 pH值 |
48 |
|
2.3.3 PZQ-SLN的形态观察 |
48-49 |
|
2.3.4 PZQ-SLN粒度的测定 |
49-50 |
|
2.3.5 PZQ-SLNζ电位的测定 |
50-51 |
|
2.3.6 PZQ-SLN包封率的测定 |
51 |
|
2.3.7 PZQ-SLN体外释放度的测定 |
51-53 |
|
2.3.8 PZQ-SLN稳定性的考察 |
53-54 |
|
3 讨论 |
54-56 |
|
3.1 SLN制备方法的选择 |
54-55 |
|
3.2 脂质材料 |
55 |
|
3.3 乳化剂的选择 |
55 |
|
3.4 ζ电位的测定 |
55-56 |
|
3.5 体外释放度的测定 |
56 |
|
4 本章小结 |
56 |
|
参考文献 |
56-58 |
|
第三章 吡喹酮脂质体的制备及理化性质的考察 |
58-68 |
|
1 仪器和试药 |
58 |
|
2 实验方法与结果 |
58-66 |
|
2.1 制备方法的选择 |
58-59 |
|
2.1.1 薄膜分散法 |
58-59 |
|
2.1.2 逆相蒸发法 |
59 |
|
2.1.3 二次乳化法 |
59 |
|
2.2 制备方法条件的优化 |
59-62 |
|
2.2.1 单因素考察 |
59-61 |
|
2.2.2 正交实验设计 |
61-62 |
|
2.3 PZQ-Lip制剂学性质的评价 |
62-66 |
|
2.3.1 外观 |
62 |
|
2.3.2 PZQ-Lip的形态观察 |
62 |
|
2.3.3 PZQ-Lip粒度的测定 |
62-63 |
|
2.3.4 PZQ-LIPζ电位的测定 |
63-64 |
|
2.3.5 PZQ-Lip包封率的测定 |
64 |
|
2.3.6 磷脂含量测定 |
64 |
|
2.3.7 PZQ-Lip体外释放的考察 |
64-65 |
|
2.3.8 PZQ-Lip稳定性的考察 |
65-66 |
|
3 讨论 |
66-67 |
|
3.1 制备方法 |
66 |
|
3.2 包封率的影响因素 |
66-67 |
|
4 本章小结 |
67 |
|
参考文献 |
67-68 |
|
第四章 吡喹酮脂质纳米粒大鼠体内药动学研究 |
68-79 |
|
1 仪器、试药与动物 |
68 |
|
2 实验方法与结果 |
68-75 |
|
2.1 分析方法的确证 |
68-70 |
|
2.1.1 色谱条件 |
68 |
|
2.1.2 血浆样品处理 |
68-69 |
|
2.1.3 方法专属性 |
69-70 |
|
2.1.4 标准曲线的制备 |
70 |
|
2.1.5 分析方法的回收率与精密度 |
70 |
|
2.1.6 最低检测限 |
70 |
|
2.2 口服体内药代动力学研究 |
70-75 |
|
2.2.1 试药 |
70-71 |
|
2.2.2 给药方案与样品采集 |
71 |
|
2.2.3 口服药动学实验结果 |
71-73 |
|
2.2.4 口服药动学参数 |
73-75 |
|
3. 讨论 |
75-77 |
|
3.1 PZQ-SLN与PZQ-Lip的体内过程 |
75-76 |
|
3.2 脂质纳米粒作用机制的探讨 |
76-77 |
|
4. 本章小结 |
77 |
|
参考文献 |
77-79 |
|
全文结论 |
79-81 |
|
致谢 |
81-82 |
|
攻读硕士学位期间发表论文情况 |
82 |
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| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.199883 |