| 【中文题名】 | 微波等离子体等方法修饰碳纳米管及其在葡萄糖传感器中的应用 |
| 【英文题名】 | Micro Wave Plasma Treated Carbon Nanotubes and Their Application in Glucose Biosensor Construction |
| 【学科专业】 | 分析化学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2006-9-20 |
| 【中关键词】 | 葡萄糖生物传感器,碳纳米管,微波等离子体,铂纳米颗粒,金纳米颗粒,葡萄糖氧化酶 |
| 【英关键词】 | carbon nanotubes,Microwave Plasma,Glucose oxidase,Pt nanoparticle,Au nanoparticle,Biosensor,Glucose, |
| 【分类导航】 | 工业技术>自动化技术、计算机技术>自动化技术及设备>自动化元件、部件>发送器(变换器)、传感器>生物传感器、医学传感器 |
| 【论文摘要】 |
碳纳米管作为一种纳米材料,由于小粒径、大比表面积效应,可对某些物质的电化学行为产生特有的催化效应,常用于酶传感器的构建。基于酶对特定底物响应而构建的电化学酶生物传感器,具有灵敏度高、选择性好、易于微型化和自动化等优点,因此具有广泛的应用前景。在电化学生物传感器的研制中,将酶稳定、高效地固定到基体电极表面而形成传感器敏感膜是一项关键的技术,本研究工作致力于发展新型生物材料固定方法,以达到改进固定酶活性、延长传感器使用寿命,提高回收率等目的,主要完成了以下研究工作:
1、利用微波等离子体技术对碳纳米管进行修饰提高其水溶性,在等离子体处理的过程中,采用了氨水作为前驱体,使其修饰上亲水性氨基,获得氨基化碳纳米管,该碳纳米管在水溶液中具有良好的溶解性能。采用红外光谱、X射线衍射表征、高分辨率数码成像等表征方法进行了表征,红外光谱谱图中的3319 cm-1及1055~822 cm-1处的峰说明了碳纳米管上修饰了大量氨基;X射线衍射则表明碳纳米管在经过辉光放电后,其主要结构未被破坏。同时,我们以葡萄糖氧化酶作为模型,研究了氨基化碳纳米管在生物传感器构建方面的应用。由于氨基化碳纳米管具有良好的生物兼容性和较... |
| 【论文题纲】 |
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学位论文原创性声明与学位论文版权使用授权书 |
4-5 |
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摘要 |
5-7 |
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Abstract |
7-12 |
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第1章 绪言 |
12-21 |
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1.1 酶传感器的分类 |
12-14 |
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1.1.1 基于电子媒介体的酶传感器 |
13 |
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1.1.2 无需电子媒介体传感器 |
13-14 |
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1.2 酶传感器的固定化方法 |
14-15 |
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1.3 酶传感器固定化技术的发展 |
15-19 |
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1.3.1 成膜技术的发展 |
15-16 |
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1.3.2 纳米材料在传感器中的应用 |
16-19 |
|
1.4 本研究工作的构思 |
19-21 |
|
第2 章 基于微波等离子体修饰的碳纳米管构建葡萄糖传感器 |
21-33 |
|
2.1 前言 |
21-22 |
|
2.2 实验部分 |
22-23 |
|
2.2.1 试剂与仪器 |
22 |
|
2.2.2 电极的处理 |
22 |
|
2.2.3 碳纳米管的处理 |
22-23 |
|
2.2.4 葡萄糖生物传感器的制备 |
23 |
|
2.3 氨基化碳纳米管的特性 |
23-28 |
|
2.3.1 氨基化碳纳米管的化学特性 |
23-25 |
|
2.3.2 氨基化碳纳米管的溶解性 |
25-26 |
|
2.3.3 氨基化碳纳米管的电化学性能 |
26 |
|
2.3.4 氨基化碳纳米管在生物传感器中的性能 |
26-28 |
|
2.4 结果与讨论 |
28-32 |
|
2.4.1 电极制备条件优化 |
28-29 |
|
2.4.2 实验条件的优化 |
29-30 |
|
2.4.3 传感器的响应 |
30-32 |
|
2.5 小结 |
32-33 |
|
第3章 基于二茂铁修饰的碳纳米管构建葡萄糖传感器 |
33-41 |
|
3.1 前言 |
33-34 |
|
3.2 实验部分 |
34-35 |
|
3.2.1 仪器和试剂 |
34 |
|
3.2.2 电极的处理 |
34 |
|
3.2.3 碳纳米管的处理 |
34-35 |
|
3.2.4 葡萄糖传感器的制备 |
35 |
|
3.2.5 实验方法 |
35 |
|
3.3 结果与讨论 |
35-40 |
|
3.3.1 二茂铁修饰的碳纳米管的循环伏安特性 |
35-36 |
|
3.3.2 酶电极对葡萄糖的计时电流响应 |
36-37 |
|
3.3.3 实验条件优化 |
37-39 |
|
3.3.4 酶电极的传感特性 |
39 |
|
3.3.5 电极在血浆溶液中的回收率检测 |
39-40 |
|
3.4 小结 |
40-41 |
|
第4章 基于铂纳米颗粒修饰碳纳米管 Nafion 膜电极的葡萄糖传感器 |
41-49 |
|
4.1 前言 |
41 |
|
4.2 实验部分 |
41-42 |
|
4.2.1 仪器和试剂 |
41-42 |
|
4.2.2 电极的处理 |
42 |
|
4.2.3 碳纳米管的处理 |
42 |
|
4.2.4 葡萄糖传感器的制备 |
42 |
|
4.2.5 实验方法 |
42 |
|
4.3 结果与讨论 |
42-48 |
|
4.3.1 Nafion-MWNT/GCE 和 Nafion/GCE 在 K_3Fe(CN)_6/ K_2Fe(CN)_4 溶液中的电化学行为 |
42-43 |
|
4.3.2 电沉积铂纳米粒子对实验的催化效应 |
43-45 |
|
4.3.3 酶电极对葡萄糖的计时电流响应 |
45-47 |
|
4.3.4 实验条件优化 |
47 |
|
4.3.5 电极的寿命、重现性及校正曲线 |
47-48 |
|
4.4 小结 |
48-49 |
|
第5章 碳纳米管负载纳米金构建葡萄糖传感器 |
49-56 |
|
5.1 前言 |
49 |
|
5.2 实验部分 |
49-51 |
|
5.2.1 仪器和试剂 |
49-50 |
|
5.2.2 电极的处理 |
50 |
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5.2.3 碳纳米管的处理 |
50 |
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5.2.4 纳米金溶液的制备 |
50 |
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5.2.5 葡萄糖传感器的制备 |
50 |
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5.2.6 试验方法 |
50-51 |
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5.3 结果与讨论 |
51-55 |
|
5.3.1 酶电极在K_3Fe(CN)_6/ K_2Fe(CN)_4 溶液中的电化学行为 |
51 |
|
5.3.2 酶电极对过氧化氢、葡萄糖的计时电流响应 |
51-52 |
|
5.3.3 实验条件优化 |
52-54 |
|
5.3.4 电极的寿命、重现性及校正曲线 |
54-55 |
|
5.4 小结 |
55-56 |
|
结论 |
56-58 |
|
参考文献 |
58-67 |
|
附录攻读学位期间发表的学术论文 |
67-68 |
|
致谢 |
68 |
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| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.379942 |