| 【中文题名】 | 稻瘟病菌致病相关基因MgS11、MgATG5和MgATG8的克隆与功能分析 |
| 【英文题名】 | Cloning and Functional Analysis of MgS11, MgATG5 and MgATG8 Gene in Magnaporthe Grisea |
| 【学科专业】 | 微生物学 |
| 【论文级别】 | 硕士论文 |
| 【投稿时间】 | 2006-9-6 |
| 【中关键词】 | 稻瘟病菌,MgS11基因,MgATG5基因,MgATG8基因,, |
| 【英关键词】 | Magnaporthe grisea,MgS11,MgATG5,MgATG8, |
| 【分类导航】 | 农业科学>分蘖期生理性病害>植物保护>病虫害及其防治>农作物病虫害及其防治>禾谷类作物病虫害 |
| 【论文摘要】 | 稻瘟病是水稻上重要的病害之一,其病原菌为子囊菌Magnaporthe grisea。了解M.grisea的致病机理不仅有利于稻瘟病的防治,而且作为研究植物病原真菌与寄主互作的理想模式系统,对于了解其它真菌的致病机理也有重要意义。致病相关基因的克隆和分析是达到这一目标的有效途径。本文克隆了在稻瘟病菌中致病相关基因MgS11、MgATG5和MgATG8,并通过与GFP蛋白的融合研究了MgS11和MgATG5基因的表达,通过基因取代的方法分析了MgS11、MgATG5和MgATG8基因在稻瘟病菌致病性及其他相关过程的作用。具体研究结果如下:
1.利用稻瘟病菌附着胞cDNA文库,在文库中找到一条S11基因,定名为MgS11;利用酵母中ATG5和ATG8基因序列,在稻瘟病菌中找到同源基因,定名为MgATG5和MgATG8。通过PCR获得了这些基因的cDNA全长,并进行序列分析。
2.通过构建MgS11、MgATG5和MgATG8基因置换载体和敲除转化,得到Knock-out突变子。通过PCR和Southern杂交分析各鉴定出1个Knock-out突变子,明确MgS11、MgATG5和MgATG8在G... |
| 【论文题纲】 |
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第一章 文献综述 |
13-34 |
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1.1 稻瘟病与稻瘟病菌 |
13 |
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1.2 稻瘟病菌的病害和侵染循环 |
13-15 |
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1.3 稻瘟病菌附着胞形成过程的信号传导和调控 |
15-29 |
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1.3.1 诱导稻瘟病菌芽管生长和附着胞形成的环境因子 |
15-17 |
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1.3.2 孢子形成基因 |
17-18 |
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1.3.3 稻瘟病菌对外界信号的识别 |
18-20 |
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1.3.4 参与稻瘟病菌附着胞形成的信号传导途径 |
20-29 |
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1.4 其他相关基因 |
29-33 |
|
1.5 本研究的目的和意义 |
33-34 |
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第二章 材料与方法 |
34-55 |
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2.1 MgS11、MgATG5、MgATG8基因的确定与序列比对 |
34 |
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2.2 实验材料 |
34-37 |
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2.2.1 细菌菌株以及稻瘟病菌菌株 |
34 |
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2.2.2 培养基配制 |
34-37 |
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2.2.3 菌株的保存与培养 |
37 |
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2.3 DNA相关操作 |
37-48 |
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2.3.1 常规 PCR、长片段 PCR(>4kb) |
37-39 |
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2.3.2 PCR产物的克隆 |
39 |
|
2.3.3 序列测定 |
39 |
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2.3.4 DNA克隆程序 |
39-44 |
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2.3.5 基因组 DNA提取 |
44-45 |
|
2.3.6 Southern杂交 |
45-48 |
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2.4 MgS11、MgATG5、MgATG8基因敲除及突变子功能分析 |
48-50 |
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2.4.1 基因置换载体的构建 |
48 |
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2.4.2 互补载体的构建 |
48-49 |
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2.4.3 稻瘟病菌原生质体的制备与转化 |
49-50 |
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2.5 MgS11和MgATG5基因的 GFP表达分析 |
50-51 |
|
2.5.1 融合载体的构建 |
50 |
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2.5.2 稻瘟病菌eGFP转化子的荧光观察 |
50-51 |
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2.6 稻瘟病菌突变体的形态学观察 |
51-52 |
|
2.6.1 生长速度与产孢量 |
51 |
|
2.6.2 附着胞的诱导 |
51 |
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2.6.3 大麦叶片致病性测定 |
51-52 |
|
2.6.4 疏水性测定 |
52 |
|
2.7 蛋白原核表达测试 |
52-55 |
|
2.7.1 原核表达载体的构建 |
52 |
|
2.7.2 基因表达 |
52 |
|
2.7.3 SDS-PAGE蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳 |
52-55 |
|
第三章 MgS11基因的克隆与功能分析 |
55-65 |
|
3.1 MgS11基因的克隆和序列分析 |
55 |
|
3.2 MgS11基因敲除载体的构建及目标置换过程 |
55-57 |
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3.2.1 载体构建策略 |
55-56 |
|
3.2.2 基因的目标置换过程 |
56-57 |
|
3.3 △MgS11突变子的获得 |
57-58 |
|
3.4 △MgS11突变子表型分析 |
58-61 |
|
3.4.1 △MgS11突变子的菌落形态 |
58-59 |
|
3.4.2 △MgS11突变子的生长速度 |
59 |
|
3.4.3 △MgS11突变子的产孢量 |
59 |
|
3.4.4 △MgS11菌丝产生附着胞 |
59-60 |
|
3.4.5 △MgS11突变子的疏水性测定 |
60-61 |
|
3.5 MgS11基因时空表达分析 |
61-63 |
|
3.5.1 载体构建 |
61-62 |
|
3.5.2 转化子的荧光表达 |
62-63 |
|
3.6 △MgS11突变子的互补分析 |
63-65 |
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第四章 MgATG5基因的克隆与功能分析 |
65-73 |
|
4.1 MgATG5基因的克隆和序列分析 |
65 |
|
4.2 MgATG5基因置换载体的构建 |
65-66 |
|
4.3 △MgATG5突变子的获得 |
66-67 |
|
4.4 △MgATG5突变子表型分析 |
67-70 |
|
4.4.1 △MgATG5突变子的菌落形态与生长速度 |
67 |
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4.4.2 △MgATG5突变子的产孢量 |
67-68 |
|
4.4.3 △MgATG5突变子的分生孢子萌发、附着胞形成 |
68-69 |
|
4.4.4 突变子△MgATG5对大麦的致病性测定 |
69-70 |
|
4.5 MgATG5基因时空表达分析 |
70 |
|
4.6 △MgATG5突变子的互补分析 |
70-71 |
|
4.7 MgATG5基因原核表达测试 |
71-73 |
|
第五章 MgATG8基因的克隆与分析 |
73-75 |
|
5.1 MgATG8置换载体的构建 |
73 |
|
5.2 △MgATG8突变子的获得 |
73-74 |
|
5.3 △MgATG8突变子表型分析 |
74-75 |
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第六章 讨论与总结 |
75-78 |
|
参考文献 |
78-85 |
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| 【DOI】 | LunWen.ID:2.2008.151291 |